寒さの区分

I〜Ill

日照条件

II, III

暖かさの区分

45〜100

土壌分類

I, II

土壌適正

高冷及び寒冷な地方の水はけの良い畑地に適し，埴壌土，砂壌土に適する. やせ地に適する．

遮光

不要

画像

植物名

ダイオウ

ラテン名

Rheum palmatum Linne

文献コード

Rheum_palmatum-Ref-1

出典（著者，雑誌，巻号頁，発行年）

昭和63年度共同研究報告書、道産生薬の品質向上と育成に関する研究、平成元年3月、北海道立衛生研究所、北海道立北見農業試験場、北海道立林業試験場、北海道立中央農業試験場、p.6-9

要約（和訳）

ダイオウは雑種を作りやすく、自然交配させた種子での繁殖では品質の安定した大黄の生産は困難である．そこで、ダイオウの組織培養法による増殖を検討した結果、2 系統のダイオウについて茎頂培養での苗の作出に成功した．この苗を圃場で3年間栽培し、その有効成分を定量した結果、親株に比べて品質が劣っていないことが証明できた.

目的

自家不和合性があり、自然交配による増殖では一定の遺伝形質を持った栽培品種の育成が困難なダイオウの、組織培養による優良品種増殖法の確立

材料（品種，系統，産地，由来）

1927-1928年にドイツのミュンヘン植物園より導入され，ホッカイダイオウとして北海道内で栽培されているダイオウ（Rheum palmatum L.）の3年生株（衛生研究所薬草園で栽培）2種（ダイオウC及びダイオウT）の根茎側芽

外植片

0.5mmの茎頂組織片

初期培養

茎頂組織片をMurashige & Skoog (MS)培地＋ナフタレン酢酸（NAA） 0.1-3.0 mg/L＋ベンジルアデニン（BA）0.1-3.0 mg/L＋ショ繍3%＋寒天0.6%、pH5.6に置床し、24 時間照明、3.000-5.000 lux， 20℃で培養した．カルス形成は、ダイオウCおよびダイオウT共にNAA濃度が高いほど良好であり、不定芽の形成は、BA濃度が高〈、NAA濃度が低い方が良好な傾向にあった．ダイオウTではNAA-BA（0.1-3.0 mg/L)濃度区で葉条塊(shoot mass) が得られ、大量の不定芽を得ることが可能となった.しかし、ダイオウCではどのNAA-BA濃度区でも葉条塊は得られなかった．

シュート増殖

ダイオウCの不定芽の形成についてさらに検討した．ダイオウCの茎頂組織を培養し、得られた不定芽を成長させると葉を形成した．得られた葉をNAA-BA(0.1-3.0 mg/L)濃度区で継代培養を続けることにより、葉の表皮から不定芽が誘導された．また、葉を葉柄から切り取り、培養することによっても表皮から不定芽が誘導された．この方法を用いることにより、ダイオウCより効率的に不定芽を得ることが可能となった．

発根

ダイオウCの茎頂組織培費により得られた葉より誘導した不定芽について、その発根条件を検討した．2-3 cmに伸長したシュートを用いて、培地の無機塩濃度およびオーキシンの種類と濃度について検討した．その結果、培地の無機塩濃度を1/2に希釈した培地(1/2MS) を用い、NAAを1.0 mg/L添加した場合に83% と高い発根率が認められ、効率よ〈発根させることが可能となった．

馴化条件

記載無し

鉢上げ・定植

記載無し

栽培条件

前述の方法で培養して作出した苗(系統CおよびT) を昭和61年6月に衛生研究所薬草園に植え付け、63年10月まで栽培した．

再生植物体の形質

約2年間圃場栽培後、掘り上げた1株の平均生重は3.8kgであった．水洗後、根をほぐし天日乾燥した．比較のため、同薬草園で種子繁殖させ栽培中の系統Cを掘り上げ、同様に乾燥した．また、雅黄と称され中国より輸入された2 試料を大阪より購入した．センノサイドA含量は、作出株C：1.41%、作出株T：1.21%、種子由来株C：0.82％、輸入品1：1.25%、輸入品2：0.47%、センノサイドB含量は、作出株C：0.13%、作出株T：0.34%、種子由来株C：0.19％、輸入品1：0.32%、輸入品2：0.12%、レイングルコサイド含量は、作出株C：1.06%、作出株T：0.87%、種子由来株C：1.47％、輸入品1：1.54%、輸入品2：0.10%であった．茎頂培養で作出した苗から得られた大黄は両系統共にセンノサイド含量が高く、品質的良いことが明らかになった．

分析した成分

センノサイドA、センノサイドB、レイングルコサイド

成分の抽出法

48メッシュ以下に粉砕した試料1.00gを精密に量り、50%含水アセトン20 mLを加えて室温で15分間振とう抽出した．遠心、分離後上澄液を除き、残渣を更に同様に抽出した．抽出液を合わせて、アセトン臭が無〈なるまで減圧濃縮した後、アセトニトリル5 mLを加えてから、脱イオン水で50 mLにメスアップした．このうちの5 mLを取り、酢酸エチル10 mLで3回抽出した．水層を酢酸エチル臭が無〈なるまで濃縮し、脱イオン水で5 mLにメスアップし、試験溶液とした．

分析法

HPLC の条件
機器：日立638型高速液体クロマトグラフ (日立波長可変型検出器付)、カラム：ヌクレオシル5C18 (4øX250 mm)、移動相：A液　アセトニトリル/水( 8：92)　B液　アセトニトリル/水(40：60)(各液にlL当り1 gのシュウ酸を添加)、グラジエント法　B液　0→100% (25分)、流速：1.2 mL/分、カラム温度：40℃、測定波長：340 nm、注入量：10μL

備考

植物名

ダイオウ

ラテン名

Rheum palmatum Linne

文献コード

Rheum_palmatum×R._coreanum-Ref-1

出典（著者，雑誌，巻号頁，発行年）

特願平6-68436

要約（和訳）

【目的】 シンシュウダイオウの遺伝的に同一なクローン植物を短期間に、かつ大量に作出する。 【構成】 シンシュウダイオウの組織培養において、0.1ないし1.0 mg/Lのインドール酢酸を 含有する培地でシュートを形成、増殖させて、シンシュウダイオウのクローン苗を作出する． 【効果】 遺伝的に同一な、センノサイド含有率の高いシンシュウダイオウが短期間に大量に栽培できる．

目的

遺伝的に同一なシンシュウダイオウのクローン植物を短期間に、かつ大量に得られるようにすることを目的とする

材料（品種，系統，産地，由来）

日本で品種改良された信州大黄（ホッカイダイオウR. palmatum×チョウセンダイオウR. coreanum Nakai)）4年生株の側芽

外植片

0.3-0.4 mmの茎頂

初期培養

4年生株でセンノサイド含有率の定かな株の側芽の中から直径約5、7、10および15 mm側芽を切り取って、水道水で洗浄し、塩化ベンザルコニウム100倍液に10分間、70％エタノールに1分間、有効塩素1%の次亜塩素酸ナトリウム溶液に10分間の順に浸漬して殺菌し、滅菌水で3回洗浄した後、実体顕微鏡下でそれぞれの側芽から1、2および4 mmの茎頂を摘出した．MS培地にインドール酢酸（IAA） 0.25 mg/Lとベンジルアミノプリン（BAP）2.0 mg/Lを組み合わせ、ショ糖30 g/L、ゲランガム2 g/Lを添加し、水酸化ナトリウムおよび塩酸でpH5.8に調整し、試験管（径4 cm×高さ13 cm）に20 mLを分注した後、121℃で20分間滅菌した．茎頂は培地に1個を置床し、明期の温度は25℃、暗期の温度は20℃、明期の時間は16時間、照度は6000 Luxとし、培養は30日間行った．その結果、茎頂からのシュート形成率は全般に低く明確な差異がみられなかった が、置床した茎頂の中で新たなシュートを5本形成しているものが出現した（側芽の径：5 mm、茎頂：2 mmにおいてシュート形成率：10%、形成シュート数：5.0本）．

シュート増殖

茎頂から5本のシュートを形成したシュートだけを選び、そのシュートを個々に分割 し、同一組成の新たな培地に移植して培養する操作、すなわち継代培養を3回繰り返し、継代培養ごとのシュートの増殖数を検討した．その結果、継代培養ごとのシュートの増殖数は大きく異なることなく、順調に増殖した（シュートの増殖本数　1回目：4.1±3.1、2回目：2.6±1.7、3回目：3.9±2.3）．しかし、個々に分割されたシュートの長さによっては増殖数に若干の違いが観察され、シュートの長さが1 cm以下の場合に増殖数が多かった．得られたシュートを用い、MS培地にBAPを単独で1.0、2.0および4.0 mg/L、BAP 2.0 mg/LにIAAを0.125および0.250 mg/Lを組み合わせて、シュートの増殖数を再度検討した．その結果、シュートの増殖数はBAPを単独で添加した場合に少なく、IAAとBAPを組み合わせことによって増加する傾向がみられ、至適な組み合わせはBAP 2.0 mg/LとIAA 0.25 mg/Lであった（シュート形成本数：3.8±2.6）．

発根

BAP 2.0 mg/LとIAA 0.25 mg/Lの組合せで培養して増殖したシュートを分割して、同一組成の新たな培地に移植し、継代培養を反復し て増殖させたシュートを用いて発根基材を検討した．発根基材はロックウールプラグ、バーミキュライトおよび水苔とし、発根基材を詰めた試験管にはMS培地の1/4量に、IAA 0.5 mg/Lとショ糖20 g/Lを添加した溶液を、試験管当たり20 mLを注入して、それぞれの発根基材に含浸させた．シュートは試験管に１本ずつ移植し、培養は50日間行った．その結果、水苔ではシュートからの不定根の形成が不良であったが、ロックウールプラグおよびバーミキュライトにおいては全てのシュートが発根した（ロックウールプラグ：発根率100%）．また、発根基材としてロックウールプラグを用いて、MS培地の量およびIAAの添加量と不定根の形成の関係を検討した．MS培地は基本量、1/2量および1/4量、IAAは0.5、1.0および2.0 mg/Lとし、これらにショ糖20 g/Lを添加して、試験管当り20 mL注入して、ロックウールプラグに含浸させた．シュートは試験管に1本ずつ移植し、培養は40日間行った．その結果、MS培地の基本量では無機塩類の濃度が高く、IAAの添加量に関係なくシュートからの不定根の形成が不良であった．また全般にIAAの添加量が高くなると、シュートの基部のカルス化が起こり、最も好適な条件はMS培地の量を1/2量とし、IAAを0.5 mg/L添加した場合であった（発根率：70%）．さらに、MS培地の量を1/2量としてショ糖の添加量と不定根の形成の関係を検討した．MS培地は1/2量、IAAは0.5 mg/Lとし、ショ糖は0、5、10および20 g/Lを添加し、培養は40日間行った．その結果、ショ糖の添加量が10 g/L以下ではシュートからの不定根の形成が著しく不良で、20 g/Lを添加した場合において多くのシュートから不定根が形成された（発根率：85%）．シュートの大きさと不定根の形成の関係を検討した結果、小さなシュートからの不定根の形成は不良であったが、シュートの長さが約1 cm以上では不定根が良好に形成された．

馴化条件

記載無し

鉢上げ・定植

記載無し

栽培条件

記載無し

再生植物体の形質

同一形質のクローン苗を多数育成して、栽培のための圃場に植え付けて4年間栽培し、また、同一圃場にも種子から育成した苗を植え付けて4年間栽培し、株ごとの乾燥根の重量（収量）およびセンノサイド含有率を比較した．その結果、乾燥根の株平均の重量は、種子から栽培した場合を100とすると、クローン苗を栽培した場合では110と増収した。株平均のセンノサイド含有率は、種子から栽培した場合が0.99%であったのに対して、クローン苗を栽培した場合では1.62%と著しく高かった．また、株ごとのセンノサイド含有率の変動率は、種子から栽培した場合が33%であったのに対して、クローン苗を栽培した場合では11%を示し、品質の均一化の顕著なことが確認された．

分析した成分

記載無し

成分の抽出法

記載無し

分析法

記載無し

備考

Rheum palmatum Linne×R. coreanum Nakai

植物名

ダイオウ

ラテン名

Rheum palmatum Linne

種苗および品種

ホッカイダイオウ，シンシュウダイオウ

繁殖

種子を用いる．

栽培適性

冷涼地を好み，土質は壌土，砂壌土，火山灰土の排水良好な丘陵地または緩傾斜地が適地である．

播種，定植および育苗

育苗は，10a当り2 kg (約15万粒）の種子を５月下旬～６月上旬（北海道地方）に条間50cmの平畦に播幅10cmほどに播種，2 cmの覆土をする．苗の掘り上げは10月に行い，根頭部の直径が1.3cm以上のものを定植に用いる．本圃への定植は，早春に平畦で条間90 cm，株間50 cm　(10a当り2,200本植）で根頭部がかくれる程度（３～５ｃｍ）の覆土をして鎮圧する．

肥料

管理

育苗では，本葉３枚程度に生育したとき，虚弱苗や密生苗の間引きを行う．除草，病虫害防除は，適宜実施する．毎年５月中・下旬に花茎を抽出し始めそれを放置すると開花し，株全体が衰弱するので，この花茎を開花に先立ち地際に近いところで切り取る．

病害虫駆除

幼苗期にハムシ（ジノミ），ネキリムシなどの被害が発生することもあるので，その防除に努める．

収穫・調製

本圃４～５年目の秋または５～６年目の早春に掘り上げる．地下部は水洗の後，適当な大きさに切断して乾燥（陽乾または60℃以下の強制乾燥）する．乾燥中はカビの発生などで変質しないように十分注意して仕上げる．乾燥後はふるいにかけ，粉塵などの夾雑物を除去して規定の麻袋などに梱包する．保管は直射日光を避け，吸湿や虫に食害されないよう特に留意する．

収量

両種とも定植後３年で約700kgである．

参考情報(生物活性)

参考情報(生物活性)ファイル

特性分類表 

栽培暦 

栽培方法関連データ 

栽培方法関連写真データ 

種子発芽情報データ 

備考

備考ファイル

植物名

ダイオウ

ラテン名

Rheum palmatum Linne

備考

掌葉大黄

さく葉標本写真情報 

導入年

保有研究部

導入番号

CHEBI

CHEMPDB

KEGG

C10404

NIKKAJI

J209.363D

PUBCHEM

SID:12590

Type

マシン名

1H-NMR

日本電子　ECS400

1H-NMR

日本電子　ECS400

生薬名

センナ

生薬英名

Senna Leaf

生薬ラテン名

SENNAE FOLIUM

生薬和名

基原植物

Cassia angustifolia Vahl(ホソバセンナ)

部位

小葉，果実

局方収載

局

食薬区分

専ら医薬品(茎は非医）

生薬成分

アントラキノン類：chrysophanol, aloe-emodin, rhein など ビアントロン類：sennoside A～D(総センノシド1.0%以上を含む) フラボノイド：kaempferolとその配糖体

成分（化合物）

Sennoside A（センノシドＡ） , Sennoside B（センノシドＢ）

性状

ひ針形〜狭ひ針形を呈し，長さ1.5〜5 cm，幅0.5〜1.5 cm，淡灰緑色〜淡灰黄緑色である．全縁で先端はとがり，葉脚は非相称，小葉柄は短い．ルーペ視するとき，葉脈は浮き出て，一次側脈は辺縁に沿って上昇し，直上の側脈は合一する．下面はわずかに毛がある．弱いにおいがあり，味は苦い．横切面を鏡検するとき，両面の表皮は厚いクチクラを有し，多数の気孔及び厚膜で表面に粒状突起のある単細胞毛があり，表皮細胞はしばしば葉面に平行な隔壁によって2層に分かれ，内層に粘液を含む．両面の表皮下には1層のさく状組織があり，海綿状組織は3〜4層からなり，シュウ酸カルシウムの集晶及び単晶を含む．維管束に接する細胞は結晶細胞列を形成する．

用途

緩下．果実（センナ実）はセンノシドの原料

調製法

開花盛期以降の8月下旬～9月に収穫する．地際から茎を刈り取り集め，さらに複葉から小葉のみを手でこぎ，乾燥する．乾燥はムシロなどの上に薄く広げて陰乾する．小葉中のセンノシド含量は開花前が高く，インドでは，開花前に主茎葉を摘み，開花後に分枝葉を採取しているといわれている．小葉のセンノシド含量は，老熟葉より若齢葉が高い傾向にあるため，収穫期が遅くならないように留意する．

エキス収率

文献情報

処方

緩下薬

モデル試料  

遺伝子情報  

日本薬局方情報

定量法

確認試験法

確認試験法(TLC)

乾燥減量

灰分

酸不溶性灰分

エキス含量

精油含量

純度試験

その他

NMR情報  2件

漢方処方情報

生物活性情報

CHEBI

CHEMPDB

KEGG

C13526

NIKKAJI

J238.581C

PUBCHEM

SID:853895

Type

マシン名

1H-NMR

日本電子　ECS400

1H-NMR

日本電子　ECS400

試験名

NO production inhibitory activity

研究領域

免疫系

試験レベル

Cell-based

プロトコール

＜ＮＯ産生抑制試験＞
９６ウェルプレートにマウスマクロファージ様細胞株ＲＡＷ２６４．７細胞を１．２×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌに調製して、２００ｕｌ撒き、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で、前培養を２時間行ない、ＬＰＳを１００ｎｇ／ｍｌ、ＩＦＮ－γを０．３ｎｇ／ｍｌの濃度になるように添加し、さらに、ＤＭＳＯに溶解した被検物質のサンプルを１００ｕｇ／ｍｌになるように投与した。３７℃、５％ＣＯ２の条件下で、１６時間、本培養を行なった。

培養上清を回収し、ＮＯ２－をグリース試薬により発色させ、５５０ｎｍ（対照６５０ｎｍ）の吸光度を測定し、下記式によりＮＯ産生抑制率を算出した。
ＮＯ産生抑制率＝（1－(ＡＳ－ＡＮ)/(ＡＤ－ＡＮ))×１００
ＡＮ：未処理群の吸光度
ＡＳ：サンプル/ＬＰＳ/ＩＦＮ添加群の吸光度
ＡＤ：ＤＭＳＯ/ＬＰＳ/ＩＦＮ添加群の吸光度

培養上清を回収した残りの細胞にＭＴＴ試薬を０．１ｍｇ／ｍｌの濃度になるように添加し、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で、４時間、培養を行なった。培養上清を捨て、１５０ｕｌのＤＭＳＯに溶解し、５５０ｎｍ（対照６５０ｎｍ）の吸光度を測定し、下記式により細胞生存率を算出した。
細胞生存率＝ＡＳ/ＡＤ×１００
ＡＳ：サンプル/ＬＰＳ/ＩＦＮ添加群の吸光度
ＡＤ：ＤＭＳＯ/ＬＰＳ/ＩＦＮ添加群の吸光度

結果タイプ

PubMed ID

備考

ダイオウ

活性試験結果情報

% inhibition

試験名

樹状細胞の成熟化試験 （CD86）

研究領域

免疫系

試験レベル

Cell-based

プロトコール

BALB/cマウス骨髄細胞を、10ng/ml GM-CSF添加RPMI-1640培養液で培養し、未成熟樹状細胞を採取した。未成熟樹状細胞を96well plateに播種し、0.1µg/mlもしくは0.5µg/ml の濃度のLipopolysaccharide（LPS）24時間刺激による成熟化に対する、生薬エキス（0.1mg/ml）による効果を測定した。樹状細胞を回収し、細胞表面分子をPF-cy7標識Anti-mouse CD86、APC標識Anti-mouse CD11cを用いて蛍光染色し、フローサイトメーターによりCD11c陽性細胞を樹状細胞としてCD11c陽性樹状細胞の各細胞表面分子の発現について解析を行った。

結果タイプ

PubMed ID

備考

活性試験結果情報

% control

試験名

樹状細胞の成熟化試験 （CD80）

研究領域

免疫系

試験レベル

Cell-based

プロトコール

BALB/cマウス骨髄細胞を、10ng/ml GM-CSF添加RPMI-1640培養液で培養し、未成熟樹状細胞を採取した。未成熟樹状細胞を96well plateに播種し、0.1µg/mlもしくは0.5µg/ml の濃度のLipopolysaccharide（LPS）24時間刺激による成熟化に対する、生薬エキス（0.1mg/ml）による効果を測定した。樹状細胞を回収し、細胞表面分子をFITC標識Anti-mouse CD80、APC標識Anti-mouse CD11cを用いて蛍光染色し、フローサイトメーターによりCD11c陽性細胞を樹状細胞としてCD11c陽性樹状細胞の各細胞表面分子の発現について解析を行った。

結果タイプ

PubMed ID

備考

活性試験結果情報

% control

試験名

樹状細胞の成熟化試験 （MHC class II）

研究領域

免疫系

試験レベル

Cell-based

プロトコール

BALB/cマウス骨髄細胞を、10ng/ml GM-CSF添加RPMI-1640培養液で培養し、未成熟樹状細胞を採取した。未成熟樹状細胞を96well plateに播種し、0.1µg/mlもしくは0.5µg/ml の濃度のLipopolysaccharide（LPS）24時間刺激による成熟化に対する、生薬エキス（0.1mg/ml）による効果を測定した。樹状細胞を回収し、細胞表面分子をPE標識Anti-mouse MHC class II、APC標識Anti-mouse CD11cを用いて蛍光染色し、フローサイトメーターによりCD11c陽性細胞を樹状細胞としてCD11c陽性樹状細胞の各細胞表面分子の発現について解析を行った。

結果タイプ

PubMed ID

備考

活性試験結果情報

% control

試験名

樹状細胞の生存率試験 （viability）

研究領域

免疫系

試験レベル

Cell-based

プロトコール

BALB/cマウス骨髄細胞を、10ng/ml GM-CSF添加RPMI-1640培養液で培養し、未成熟樹状細胞を採取した。未成熟樹状細胞を96well plateに播種し、0.1µg/mlもしくは0.5µg/ml の濃度のLipopolysaccharide（LPS）24時間刺激下における、生薬エキス（100µg/ml）による影響を測定した。7AADにより死細胞の核染色を行い、フローサイトメーターによりCD11c陽性樹状細胞の生存率を測定した。

結果タイプ

PubMed ID

備考

活性試験結果情報

% control